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來源: 發(fā)布時(shí)間:2025-04-05

外泌體的形成與鑒定:首先,細(xì)胞膜內(nèi)陷形成一個(gè)杯狀結(jié)構(gòu),包括細(xì)胞表面蛋白和與細(xì)胞外環(huán)境相關(guān)的可溶性蛋白,導(dǎo)致早期胞內(nèi)體(early-sortingendosome,ESE)的從頭形成,或者是杯狀結(jié)構(gòu)直接和已經(jīng)存在的ESEs融合;trans-高爾基體和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)也能協(xié)助形成ESEs。ESE成熟后形成晚期胞內(nèi)體(late-sortingendosomes,LSEs),較終形成MVBs(也稱為多囊內(nèi)小體)。MVBs是通過endosome限制膜向內(nèi)凹(即質(zhì)膜雙凹)形成的,這一過程導(dǎo)致MVBs含有多個(gè)ILVs。MVB可以與溶酶體或自噬體融合,較終降解或與質(zhì)膜融合釋放作為外泌體的ILVs。外泌體表面蛋白包括四聚體蛋白、整合蛋白、免疫調(diào)節(jié)蛋白等。外泌體可以包含不同類型的細(xì)胞表面蛋白、細(xì)胞內(nèi)蛋白、RNA、DNA、氨基酸和代謝物。使用可截留100KD分子量的膜,通過離心截留上清中的外泌體,截留完成后。外泌體的提取分離:超濾離心。北京正規(guī)外泌體提取試劑服務(wù)電話

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外泌體的提取、分離方法:免疫親和層析法。免疫親和層析法是利用生物體內(nèi)存在的抗原、抗體之間高度特異性的親和力進(jìn)行分離的方法,主要用于生物大分子的分離、純化。將其應(yīng)用于外泌體的分離主要是借助外泌體表面的特異性抗體,如TSG101或四跨膜蛋白。此方法的原理是利用抗原抗體的特異性結(jié)合,只有囊泡表面有特異性的抗體才可以被識(shí)別,這使得提取的外泌體純度高,但是產(chǎn)量低。Zarovni等分別用超速離心、密度梯度離心和免疫層析法,從血漿和細(xì)胞上清中提取外泌體蛋白,結(jié)果表明,免疫親和層析法得到的外泌體表面存在多種標(biāo)記蛋白(Alix、CD9、CD63),同時(shí),ELISA和PCR結(jié)果也證明了該方法的可行性。北京正規(guī)外泌體提取試劑服務(wù)電話外泌體的提取、分離方法:尺寸排阻色譜法和超濾法。

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為了分離外泌體,研究人員用兩個(gè)這樣的單元串聯(lián)構(gòu)建了一個(gè)裝置。首先,使用聲波從血液樣品中除去細(xì)胞和血小板。一旦細(xì)胞和血小板被去除,樣品進(jìn)入第二個(gè)微流體單元,然后使用較高頻率的聲波將外泌體與稍大的細(xì)胞外囊泡分開。這項(xiàng)工作的通訊作者之一,麻省理工學(xué)院材料科學(xué)與工程系科學(xué)家MingDao博士說:“聲波更溫和。而且在分離時(shí),這些囊泡受處理的時(shí)間只有1秒鐘或更短。這是一個(gè)很大的優(yōu)勢?!笔褂迷撛O(shè)備,處理100微升未稀釋血液樣本只需要不到25分鐘?!斑@種新技術(shù)可以解決當(dāng)前外泌體分離技術(shù)的缺點(diǎn),如周期長,一致性差,產(chǎn)量低,污染以及完整性受損等。我們想要把提取高質(zhì)量的外泌體的過程簡化為按一個(gè)按鈕就在10分鐘內(nèi)獲得所需樣品一樣簡單?!毖芯咳藛T們說。

外泌體的提取方法學(xué)規(guī)范、統(tǒng)一定量及鑒定等。關(guān)于外泌體的提取有超速離心、試劑盒、超濾法、蔗糖密度梯度離心等,然而各種方法均有其利弊。超速離心法是目前外泌體相關(guān)文章中的主流方法,由于離心步驟繁瑣,費(fèi)事費(fèi)力,而且步驟多導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)中容易污染,且損耗量大,使得較終回收的外泌體不穩(wěn)定。而且對(duì)于抽提細(xì)胞上清來說,更是極為不請(qǐng)便,試想用提取300ml的上清需要6個(gè)50ml離心管,無論是過濾還是后續(xù)的每一步的離心去沉淀,都具有操作極其不便的缺點(diǎn),總之非常麻煩。而超濾法存在外泌體會(huì)堵塞膜孔,造成濃縮效率低,濃縮管重復(fù)利用差,甚至堵塞在膜孔的外泌體還可能會(huì)粘連成團(tuán),造成損失及較后的數(shù)據(jù)有誤差,對(duì)于后續(xù)實(shí)驗(yàn)也有影響。離心除去細(xì)胞器,留取上清。

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外泌體的提取方法:1.超速離心法(差速離心)。超離法是較常用的外泌體純化手段,采用低速離心、高速離心交替進(jìn)行,可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單,獲得的囊泡數(shù)量較多而廣受歡迎,但過程比較費(fèi)時(shí),且回收率不穩(wěn)定(可能與轉(zhuǎn)子類型有關(guān)),純度也受到質(zhì)疑;此外,重復(fù)離心操作還有可能對(duì)囊泡造成損害,從而降低其質(zhì)量。2.密度梯度離心。在超速離心力作用下,使蔗糖溶液形成從低到高連續(xù)分布的密度階層,是一種區(qū)帶分離法。通過密度梯度離心,樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高,但步驟繁瑣,耗時(shí),對(duì)離心時(shí)間極為敏感此提取方法條件復(fù)雜,成本高。北京正規(guī)外泌體提取試劑服務(wù)電話

這些試劑盒不需要特殊設(shè)備,隨著產(chǎn)品不斷更新?lián)Q代,提取效率和純化效果逐漸提高。北京正規(guī)外泌體提取試劑服務(wù)電話

外泌體(Exosomes)是細(xì)胞分泌到胞外的一種囊泡(ExtracellularVesicles,EVs),其大小為30-150nm,具有雙層膜結(jié)構(gòu)和茶托狀形態(tài),含有豐富的內(nèi)含物(包括核酸、蛋白和脂質(zhì)等),參與細(xì)胞間的分子傳遞。外泌體普遍存在于細(xì)胞培養(yǎng)上清以及各種體液中,包括血液、唾液、尿液、乳汁等,同時(shí)也存在于組織樣本中,如腦組織、肌肉組織、脂肪組織等。腦組織分離方法簡述:將腦組織剪成薄片,放入離心管中加上消化液進(jìn)行消化,經(jīng)水浴、反復(fù)輕輕上下顛倒,再用移液間斷緩慢吹吸至消化結(jié)束。隨后加入培養(yǎng)基于消化液中,混勻,置于冰上。再進(jìn)行一系列的差速超速離心過程,包括除雜、濾膜過濾、超離等。較后用PBS重懸外泌體,用重懸后的外泌體進(jìn)行下面的透射電鏡(TEM)、納米粒徑追蹤分子(NTA)和markerWB鑒定。來源于細(xì)胞內(nèi)溶酶體微粒內(nèi)陷形成的多囊泡體,經(jīng)多囊泡體外膜與細(xì)胞膜融合后釋放到胞外基質(zhì)中北京正規(guī)外泌體提取試劑服務(wù)電話